4. RNA完整性检测

RNA完整性是RNA-seq文库构建中最先决定成败的质控关口。提取到的总RNA若发生降解,rRNA峰会被低分子量弥散信号取代,mRNA的完整比例随之下降,后续oligo(dT)富集或rRNA去除都会偏向短片段,最终表现为5′端覆盖度下降、3′端堆积、基因检出数减少。因此,在进入文库构建前,必须用可量化的方法判断RNA是否“够完整”。

三种检测手段的定位差异

凝胶电泳是最传统的方法:变性琼脂糖凝胶中,完整真核总RNA应呈现两条清晰的rRNA主带(28S与18S),28S亮度约为18S的1.5~2倍,且两者之间及主带上方无明显弥散。它的优点是直观、成本低,缺点是分辨率有限、无法给出标准化数值、对轻微降解不敏感,且上样量、染色和拍照条件都会影响判读。

Agilent Bioanalyzer基于芯片式毛细管电泳,样品在微通道中按分子量分离,激光诱导荧光检测得到电泳图(electropherogram)和虚拟凝胶图。它灵敏度高、所需样品量少(约1~5 ng总RNA即可),并自动计算RIN(RNA Integrity Number)。TapeStation采用类似的微流控电泳原理,配合ScreenTape,通量更高、操作更简便,输出RINe(RNA Integrity Number equivalent)与DV200。三者并非互相替代,而是精度、通量与成本之间的取舍:凝胶电泳适合快速初筛,Bioanalyzer适合少量珍贵样品的精细评估,TapeStation适合批量样本的标准化质控。

RNA完整性检测:电泳图谱与RIN/DV200判读 完整RNA(RIN 9~10) 28S 18S 两主带清晰,基线平坦 部分降解(RIN 5~7) 28S↓ 18S 主带变矮,基线抬高 严重降解(RIN 1~3) 主带消失,低分子量弥散 判读标准与建库策略 RIN ≥ 8 常规建库,优先使用 RIN 6~7 可建库,关注3′偏倚 RIN < 6 改用DV200评估 DV200 ≥ 50% 降解样本仍可建库 RIN算法要点 综合整条电泳图的峰高、峰面积、28S/18S比值与降解片段比例,输出1~10分。 RIN对28S/18S比例敏感,但不直接反映mRNA完整度,故降解样本需结合DV200。 DV200 = 大于200 nt的RNA片段占总RNA的百分比,直接对应可建库的mRNA片段比例。

RIN算法:它到底在算什么

RIN不是简单的28S/18S比值,而是对整条电泳图进行多特征建模后给出的1~10分。算法会提取区域峰高、峰面积、28S与18S峰的位置和宽度、两峰之间的弥散程度、低分子量区域的信号占比等特征,再通过已训练的分类模型映射为完整性分数。因此,RIN对28S/18S比例变化非常敏感,但它的“盲区”在于:它主要描述rRNA的状态,而rRNA完整并不等于mRNA完整。某些组织(如胰腺、肝脏)本身rRNA结构特殊,或提取过程中rRNA被部分去除,都可能出现RIN偏低但mRNA仍可用的情形。

RIN的判读通常遵循以下经验区间:RIN≥8为高质量,适合常规poly(A)建库;RIN 6~7为可接受,但需关注3′偏倚;RIN<6时,若仍要建库,应改用DV200作为主要决策指标。需要强调的是,RIN是样本层面的整体评分,不能替代对电泳图形态的人工复核——例如出现异常尖峰、基线漂移或“假28S峰”时,RIN可能被高估或低估。

DV200:降解样本的建库通行证

DV200(Percentage of RNA fragments >200 nucleotides)由TapeStation或Bioanalyzer的smear分析给出,定义为大于200 nt的RNA片段占总RNA信号的百分比。它直接对应文库构建中可被逆转录和接头连接的片段比例,因此对FFPE样本、降解组织或微量样本尤其有价值。常见判读为:DV200≥70%为优质;50%~70%可建库,但需增加起始量或调整片段化时间;30%~50%属于高风险,建议使用专门针对降解RNA的建库试剂盒;DV200<30%通常不建议继续,除非样本极其珍贵且接受数据质量下降。

一个实用的组合策略是:先看RIN,RIN≥8直接进入建库;RIN<8时看DV200,DV200≥50%仍可建库,但应在文库质控中重点检查插入片段分布和5′/3′覆盖均匀性。对于FFPE样本,RIN往往很低甚至无法计算,此时DV200是唯一可靠的决策依据。

常见异常图谱与排查方向

实际检测中,电泳图常出现几类典型异常。第一类是“28S峰缺失、18S峰突出”,常见于RNA已明显降解,也可能是某些物种28S rRNA发生“隐性断裂”(hidden break),在变性条件下28S会裂解为两个片段,导致28S峰消失但样本并未降解。第二类是“基线整体抬高、主带模糊”,多与样品中残留的酚、胍盐、乙醇或高浓度盐有关,会抑制电泳分离和荧光标记,此时应重新纯化(如乙醇沉淀或柱纯化)后再检测。第三类是“出现高分子量肩峰或额外尖峰”,可能来自基因组DNA污染,需用DNase I消化后复检。第四类是“峰形正常但RIN异常低”,需检查是否上样量过低、毛细管堵塞或试剂过期,建议用标准品(如Agilent RNA 6000 Nano Ladder)验证系统状态。

对于珍贵或微量样本,建议先用TapeStation或Bioanalyzer检测,保留剩余样品用于建库;凝胶电泳可作为快速初筛,但不宜作为唯一判据。若样本量极少,可考虑使用高灵敏度试剂(如RNA 6000 Pico)以降低上样需求。
RIN与DV200都不是绝对阈值,而是风险提示。RIN低但DV200高的样本仍可能产出可用数据,但需要在建库前与实验目的、样本来源和预期数据质量之间做权衡,并在报告中明确记录所用判据。

可执行的质控记录示例

为保证结果可追溯,建议在样本登记表中记录以下字段(示例格式,实际数值需以真实检测为准):

样本编号检测方法RIN/RINeDV20028S/18S图谱备注建库决策
S-001TapeStation9.2—1.9两主带清晰常规建库
S-002Bioanalyzer6.8—1.1基线轻度抬高建库,关注3′偏倚
S-003TapeStation2.558%—主带消失,弥散降解专用建库
S-004凝胶电泳——≈1.028S弱,疑似降解复检后决策

记录时需注意:RIN与RINe来自不同平台,数值不可直接混用比较;DV200仅在部分平台和软件版本中输出;凝胶电泳的28S/18S比值应通过凝胶成像定量,而非目测。只有把检测方法、数值、图谱形态和最终建库决策绑定在一起,质控记录才真正具备回溯价值。