2. 样本采集与质量控制

全基因组测序(WGS)对DNA的完整性、纯度和总量要求远高于靶向测序。一个合格的WGS样本,从采集那一刻起就决定了后续数据质量的上限。本节围绕血液、唾液、组织三类常见样本,讲清采集规范、运输保存条件,以及DNA提取前必须完成的QC指标与常见问题处理。

一、三类样本的采集规范

血液样本是WGS最常用的样本类型。推荐使用EDTA抗凝管(紫帽),采血量通常为2~5 mL。EDTA能有效螯合Ca²⁺,抑制凝血级联并灭活DNase,对后续DNA完整性最友好。肝素抗凝管(绿帽)应避免使用,因为肝素是PCR和酶切反应的强抑制剂,即使经过纯化也可能残留,导致建库失败。采血后应立即轻柔颠倒混匀8~10次,使抗凝剂充分作用,切忌剧烈振荡,否则会造成白细胞破裂、释放基因组DNA,反而增加背景游离DNA比例。

唾液样本采集无创、易接受,适合大规模人群队列。但唾液中含有大量细菌、食物残渣和口腔脱落上皮细胞,人源DNA占比可能低至10%~30%。采集前30分钟应禁食、禁水、禁烟,并用清水漱口。使用专用唾液采集器(如含稳定液的收集管)时,按说明书采集1~2 mL,立即与稳定液混匀。稳定液的作用是抑制核酸酶、固定细胞,室温下可稳定数周。若使用普通离心管收集唾液,则需尽快低温处理,否则细菌会快速繁殖,导致人源DNA比例进一步下降。

组织样本包括新鲜组织、冷冻组织和FFPE(福尔马林固定石蜡包埋)组织。新鲜组织离体后应在30分钟内切成≤0.5 cm³的小块,液氮速冻后转入-80℃保存,或直接放入RNAlater等保存液中。FFPE样本的DNA常发生交联和片段化,用于WGS时需评估片段大小,通常要求主带≥1 kb,否则建议改用靶向测序。组织采样应避开坏死区和脂肪组织,优先取肿瘤细胞含量高的区域,并同步留取癌旁正常组织作为对照。

三类样本采集 → 运输保存 → 提取前QC 全链路 血液样本 • EDTA紫帽管,2~5 mL • 禁用肝素管(抑制PCR) • 轻柔颠倒混匀8~10次 • 4℃短期 / -80℃长期 • 避免剧烈振荡致溶血 • 人源DNA占比 >95% 唾液样本 • 采集前30 min禁食禁水 • 专用采集器 + 稳定液 • 采集1~2 mL,立即混匀 • 室温稳定数周 / 4℃更佳 • 人源DNA占比 10%~30% • 细菌污染是主要风险 组织样本 • 离体30 min内处理 • 切≤0.5 cm³,液氮速冻 • -80℃保存或RNAlater • 避开坏死区与脂肪 • FFPE需评估片段大小 • 同步留癌旁正常对照 运输与保存条件 血液:4℃冰袋运输,24 h内提取;长期-80℃ 唾液:室温稳定液管可常温运输;无稳定液需4℃ 组织:干冰运输,避免反复冻融(≤2次) 所有样本:避免阳光直射、剧烈颠簸、温度波动 DNA提取前QC核心指标 ① 总量:≥1 μg(WGS推荐≥3 μg) ② 纯度:OD260/280 = 1.8~2.0 ③ 完整性:主带≥20 kb ④ OD260/230 >1.8(去盐/去酚) ⑤ 无RNA污染(RNase处理) ⑥ 人源DNA占比达标

二、运输与保存条件

样本运输的核心原则是控温、防震、防反复冻融。血液样本在4℃条件下可稳定24~48小时,超过48小时白细胞会逐渐凋亡,基因组DNA开始降解,表现为琼脂糖凝胶电泳主带变模糊、出现小片段拖尾。若需长期保存,应分离白膜层或直接冻存全血于-80℃,避免使用-20℃,因为-20℃下冰晶反复形成会机械剪切DNA。

唾液样本若使用含稳定液的专用采集器,可在室温下稳定数周,运输时无需冰袋,极大降低了物流成本。但若使用无稳定液的普通管,必须4℃冷藏并在24小时内处理,否则细菌过度生长会导致人源DNA占比骤降,后续建库时细菌序列大量占用测序数据。

组织样本的运输必须使用干冰,确保全程-70℃以下。反复冻融是组织DNA降解的首要原因,每次冻融都会产生冰晶切割DNA。建议在初次冻存前就将组织分装成小份,每份仅够一次提取使用,避免整块组织反复取用。FFPE样本常温运输即可,但需注意防潮,提取前应评估DNA片段化程度。

三、DNA提取前QC指标

在进入DNA提取之前,必须对样本进行QC,判断其是否满足WGS建库要求。核心指标包括:

  • 总量:WGS建库通常需要≥1 μg DNA,推荐≥3 μg。总量不足会导致建库时PCR循环数增加,引入扩增偏倚和重复序列。
  • 纯度:OD260/280应在1.8~2.0之间。低于1.8提示蛋白质或酚类污染;高于2.0提示RNA残留。OD260/230应>1.8,低于此值提示盐离子、乙醇或胍盐残留,会抑制后续酶反应。
  • 完整性:琼脂糖凝胶电泳主带应≥20 kb,无明显小片段拖尾。若主带弥散或集中在低分子量区域,说明DNA已严重降解,不适合WGS。
  • 人源DNA占比:唾液样本尤其需要关注。可通过qPCR扩增人源特异性基因(如β-actin)与细菌16S rRNA基因对比评估。人源占比低于50%时,WGS数据中细菌序列会显著增加,影响变异检测灵敏度。

四、常见问题处理

问题1:血液样本溶血。溶血后血浆呈红色,白细胞破裂释放DNA,但同时也释放大量DNase。处理方式:若溶血轻微,可尝试分离白膜层后提取;若溶血严重,建议重新采样。预防措施是采血后避免剧烈振荡和高温存放。

问题2:唾液样本人源DNA占比低。常见于采集前未漱口、采集时间过长或稳定液失效。处理方式:可尝试用差速离心去除细菌和食物残渣,或使用人源细胞富集试剂盒。若占比仍低于30%,建议重新采集。

问题3:组织样本DNA降解。表现为电泳主带模糊、小片段增多。处理方式:若降解程度轻,可尝试缩短提取时间、使用温和裂解液;若降解严重,建议改用FFPE样本的建库策略或重新取样。预防关键是离体后快速冷冻、避免反复冻融。

问题4:OD260/230偏低。提示盐离子或有机溶剂残留。处理方式:用70%乙醇洗涤两次,或使用硅胶柱纯化。若为胍盐残留,需增加洗涤体积和次数。

实操建议:建议在样本接收时即建立QC记录表,记录样本类型、采集时间、运输温度、到达时状态、总量、OD260/280、OD260/230、电泳结果和人源占比。只有全部指标达标,才进入DNA提取流程。对于临界样本,可先进行小体积提取测试,评估是否值得继续投入WGS成本。

总之,样本采集与QC是WGS实验工程的第一道关口。血液、唾液、组织各有其采集规范和保存要点,运输过程中控温防震是共性要求。提取前必须完成总量、纯度、完整性和人源占比四项核心QC,并根据常见问题采取针对性处理。只有把好这一关,后续的建库、测序和数据分析才有可靠的基础。