三、实验设计:样品制备与捕获芯片

说到Visium实验,我最常被问到的问题是:“组织样本到底该怎么处理?芯片上的那些小圈圈是什么?” 第一个问题,其实大部分问题都出在样品制备阶段。第二个问题,理解了芯片设计,你的质控思路就清晰了一半。

我们直接聊干货。样品制备和芯片捕获,是整个空间转录组实验的“地基”。我这里不讲那些花哨的理论,就按我实际做实验的习惯来拆解。

3.1 样品制备的核心步骤

一个好的空间转录组实验,80%的成败在样品制备。我个人习惯把整个流程分成四个阶段:

  1. 组织收集与包埋:新鲜组织,越快处理越好。
  2. 冷冻切片:厚度控制是门手艺活。
  3. 组织贴片与固定:贴到芯片上,这一步要稳。
  4. 染色与成像:为后续的空间对齐提供参考。

你想想看,一个不当心的操作,比如切片时卷曲了,或者固定时间不够,后面所有数据都会打折扣。我在项目中遇到过一位同事,组织贴片时用力过猛,结果把芯片上的捕获点阵都给刮花了。嗯… 那批样品最后只能重做。

下面是各步骤的关键参数:

步骤 关键参数 常见问题 我个人建议
组织包埋 OCT 包埋剂,-80°C 速冻 冰晶形成,组织破碎 使用异戊烷辅助速冻,减小冰晶
冷冻切片 厚度 10-20 µm,温度 -20°C 切片卷曲、褶皱、厚度不均 切片前让组织在切片机内平衡30分钟
组织贴片 贴合温度 37°C,无气泡 组织与芯片间有气泡 用平头镊子轻压,从一侧向另一侧赶走气泡
组织固定 甲醇固定 30 分钟(-20°C) 固定时间不足导致RNA降解 固定后立即进行 H&E 染色或直接透化

经验之谈:组织切片厚度不是越薄越好。10 µm 适合细胞密度高的组织(如肿瘤),20 µm 适合细胞稀疏的组织(如脑组织)。太薄的切片容易破裂,太厚则透化不均匀。我一般做脑组织切片用 14 µm,效果比较稳。

3.2 捕获芯片的结构与设计

Visium 芯片的核心,说白了就是一块载玻片上的“捕获点阵”。每个捕获点(Spot)直径 55 µm,点间距 100 µm。每个点里都固连着带有空间条形码(Spatial Barcode)的探针。

为什么会设计成这样? 每个捕获点捕获到的 mRNA 都会被打上独一无二的条形码。测序之后,我们根据这个条形码就能反推出 mRNA 来自组织切片上的哪个位置。这就是“空间”二字的由来。

我曾经被问到:“一个捕获点大约能捕获多少个细胞?” 这其实要看组织类型。细胞直径一般在 10-20 µm,一个 55 µm 的捕获点,理论上能覆盖 1 到 10 个细胞不等。所以,Visium 的分辨率是“近单细胞”水平,但不是真正的单细胞。

下面这张图把整个实验逻辑串联了起来:

Visium 实验流程与质控关键节点 1. 组织样品制备 冷冻切片 + 贴片 2. 捕获芯片反应 透化 + mRNA捕获 3. cDNA 文库构建 RT-PCR + 扩增 4. 高通量测序 空间图谱 质控关键节点:RNA完整性 | 组织形态 | 捕获效率 | 测序饱和度 每一步都必须进行质控,否则数据不可靠 捕获芯片(Visium Slide)设计 每个捕获点(Spot)= 55µm直径,含有空间条形码探针 点阵布满整个捕获区域,每个点捕获 1~10 个细胞 质控指标:每个捕获点检测到的 UMI 总数 > 100

3.3 样品制备阶段的关键质控

样品制备阶段的质控,很多人会忽略。我个人认为,这个阶段的质控比后期生信质控更重要。为什么呢?因为有些问题,生信方法根本救不回来。

3.3.1 RNA 完整性检查

先看组织总 RNA 的 RIN 值(RNA Integrity Number)。这个值低于 7,我建议直接放弃。RIN 值低意味着 RNA 已经降解,捕获到的片段会偏短,而且 3‘ 端偏好性会非常严重。我在项目里遇到过 RIN 值 6.5 的样品,结果分析时大部分基因都在 3’ UTR 区域,没法看。

质控阈值:

  • RIN ≥ 7.0:合格
  • RIN 介于 6.0 ~ 7.0:高风险,建议做预实验
  • RIN < 6.0:坚决重取样

3.3.2 明亮场成像检查

组织贴片到芯片上,经过 H&E 染色后,一定要先拍一张明亮场全切片图。这步是为了看:

  • 组织有没有褶皱或破裂
  • 有没有明显的气泡
  • 组织边缘是否完整

我曾经因为切片时刀片钝了,导致组织切片边缘有锯齿状撕裂。这种样品即便跑完测序,空间对齐也会出错。所以,我建议每张切片都拍一张高分辨率的明场图,存档并检查。

3.3.3 透化时间的优化

这是样品制备阶段最容易出错的地方。透化时间过短,mRNA 释放不出来,捕获效率低;时间过长,mRNA 会扩散到相邻捕获点,造成“空间串扰”。

官方推荐的做法是做透化时间梯度测试。通常用 3, 6, 9, 12, 18, 24 分钟这几个时间点。我在一个胰腺癌项目中测试发现,18 分钟效果最好。但另一个脑组织样本,12 分钟就过透了。所以,不同组织类型必须单独优化。

警告:千万不要跳过透化时间的优化。直接使用官方推荐时间做正式实验,成功概率不超过 30%。你是用别人的数据赌自己的实验,不划算。

3.4 捕获芯片的后处理与存储

样品制备完成后,如果你不打算立刻进行透化和捕获,可以暂时存储。但要注意:

  • 贴好组织的芯片,可以短期保存在 -80°C 干燥环境中,最多 1 周。
  • 完成 H&E 染色并成像后的芯片,也应尽快进行透化。
  • 长时间存储会导致组织脱水,影响 RNA 捕获效率。

说白了,拿到芯片后,最好在 48 小时内完成所有湿实验步骤。放太久的样品,数据质量会肉眼可见地下降。

3.5 我的一点总结

样品制备是一个“慢工出细活”的阶段。我个人建议,实验前花一小时规划好流程,比实验过程中手忙脚乱要强得多。

  • 提前准备好预冷好的甲醇、异戊烷、OCT 包埋剂。
  • 切片机的刀片一定要锋利,最好每切片一两次就检查一下。
  • 组织贴片到芯片上后,先不要急着做透化,看一眼显微镜下有没有气泡。
  • 对于每个新组织类型,都先做透化时间梯度测试,哪怕只做一次。

记不记得我开始说的那个刮花芯片的同事? 后来他每次贴片之前,都会先用镊子轻轻碰一下组织边缘,确认它已经平整地贴合在芯片上。实验习惯就在这个过程中一点点养成了。