3. 临床样本采集与前处理工程

多组学研究的成败,往往在样本进入测序仪或质谱仪之前就已经决定。血液、组织、尿液三类样本承载的分子信息不同,对采集、运输、存储和前处理的要求也各不相同。本节围绕“如何设计一个可执行、可追溯、可复现的多组学样本队列采集与前处理方案”展开,重点讲清操作对象、关键参数、时间窗口和质控判断依据。

一、三类样本的分子定位与采集差异

血液是循环系统的“实时快照”,适合做基因组(gDNA)、cfDNA、血浆蛋白组和代谢组。采集时需区分EDTA抗凝管(基因组、cfDNA)、柠檬酸钠管(凝血相关蛋白)和促凝管(血清)。组织样本是空间与细胞异质性的来源,需在离体后尽快处理,用于DNA、RNA、蛋白和空间组学。尿液是非侵入性样本,适合代谢组、蛋白组和尿液cfDNA,但受饮水、pH和菌群影响大,需记录采集时段与体积。

三类样本的共同敌人是时间与温度。离体后缺血时间、室温放置时间、冻融次数都会改变分子丰度。因此方案设计的第一原则是:先固定时间窗口,再选择保存方式。

多组学样本队列采集与前处理链路 血液 / 组织 / 尿液 → 采集 → 运输 → 分装 → 存储 → 质控 → 组学分配 血液样本 EDTA管:gDNA / cfDNA 促凝管:血清蛋白/代谢 采集后30 min内离心 室温≤2 h,冰上运输 组织样本 离体后缺血时间≤30 min 切分:DNA / RNA / 蛋白 / 空间 液氮速冻或RNAlater 避免反复冻融,记录块径 尿液样本 晨尿或定时尿,记录体积 离心去沉渣,分装上清 代谢组需加防腐剂 pH与采集时段必须记录 统一前处理节点:离心参数 · 分装体积 · 冻存温度 · 条码绑定 血浆:1600 g / 10 min / 4℃ → 16000 g / 10 min 去血小板;组织:液氮研磨或匀浆;尿液:2000 g / 15 min 存储策略 -80℃:DNA/蛋白/代谢短期 -150℃或液氮:RNA/长期队列 分装为单次用量,避免反复冻融 质控判断 DNA:A260/280 1.8–2.0,DIN≥7 RNA:RIN≥7,28S/18S≥1.5 蛋白:BCA定量,无降解条带 组学分配原则:同一受试者多组学样本共享唯一队列ID,按时间点与样本类型建立映射表 基因组←血液gDNA;转录组←组织RNA;蛋白组←血浆/组织;代谢组←血清/尿液;cfDNA←血浆

二、采集与前处理SOP的关键参数

以血液cfDNA为例,采血管选择K2EDTA管,采集后轻柔颠倒8–10次混匀,禁止剧烈震荡以免溶血。室温放置不超过2小时,若无法及时离心,应在4℃暂存但不超过4小时。离心分两步:第一步1600 g、4℃、10分钟,吸取血浆层;第二步16000 g、4℃、10分钟去除残余细胞碎片。血浆分装为1 mL/管,-80℃保存。cfDNA提取时需使用片段大小选择磁珠,目标片段约170 bp,避免基因组DNA污染。

组织样本的关键是“冷缺血时间”和“切分顺序”。离体后30分钟内完成切分,优先切取用于RNA的部分,立即放入液氮或RNAlater。用于空间组学的组织块应保持形态完整,避免挤压,可包埋于OCT后-80℃保存。切分时记录块径(如3 mm×3 mm×3 mm),因为块径影响匀浆效率和提取产量。

尿液样本需记录采集时段(晨尿/随机尿)、体积和pH。代谢组学建议加入叠氮钠至0.02%抑制细菌生长,蛋白组学则需离心去除细胞和碎片。尿液样本不宜反复冻融,建议分装为0.5 mL/管。

三、队列方案设计示例

假设某肺癌多组学队列计划入组200例,每例采集血液、肿瘤组织和配对癌旁组织、尿液。方案设计如下:

样本类型采集容器运输条件前处理时限存储温度目标组学
全血K2EDTA管4℃冰盒2 h内离心-80℃gDNA、cfDNA
血清促凝管室温≤1 h1 h内离心-80℃蛋白组、代谢组
肿瘤组织冻存管/RNAlater液氮30 min内切分-150℃RNA、蛋白、空间
癌旁组织冻存管液氮30 min内切分-150℃DNA、RNA
尿液无菌尿杯4℃2 h内离心-80℃代谢组、cfDNA

每例样本分配唯一队列ID,格式为LC-2024-001,子样本ID追加类型后缀,如LC-2024-001-BL(血液)、LC-2024-001-TU(肿瘤)、LC-2024-001-UR(尿液)。所有样本在采集、运输、分装、入库环节均需扫码记录时间戳和操作人。

四、质控与异常处理

质控不是最后一步,而是贯穿全程。采集环节检查溶血、凝块和标签错误;运输环节检查温度记录仪是否超标;前处理环节检查离心后分层是否清晰;入库后检查DNA/RNA完整性和蛋白浓度。若RNA的RIN值低于7,应标记为“仅用于DNA或蛋白组学”,不进入转录组分析。若cfDNA提取量低于5 ng,需评估是否重新采集或改用低输入建库方案。

常见异常与处理:溶血样本会导致血红蛋白污染,影响蛋白组和代谢组,应记录并优先用于gDNA提取;组织RNA降解时,可尝试从同一块组织的DNA或蛋白部分补救;尿液pH过高(>8)会加速代谢物降解,需在方案中限定采集时段并记录。

五、可执行成果:样本采集与前处理记录表

以下为可直接用于队列执行的记录表字段示例,每个样本一行,随样本流转:

队列ID:LC-2024-001
样本类型:血液 / 组织 / 尿液
采集时间:2024-06-01 08:15
采集人:张三
抗凝剂/容器:K2EDTA / 促凝管 / 无菌尿杯
运输温度:4℃ / 室温 / 液氮
运输时长:45 min
前处理开始时间:2024-06-01 09:00
离心参数:1600 g, 4℃, 10 min
分装管数:4
存储温度:-80℃
存储位置:FZ-A-03-12
质控结果:DNA A260/280=1.86;RNA RIN=8.2;蛋白浓度=2.4 μg/μL
异常记录:无
操作人:李四
复核人:王五

该记录表与条码系统绑定后,可实现从采集到组学数据的全链路追溯。方案设计时还需预留10%–15%的样本冗余,用于质控失败后的重采或复测。最终,一个可复现的多组学队列,依赖的不是单点技术,而是每个环节的时间、温度和标识都被明确约束并记录。