2. 样本采集与处理工程

全外显子测序(WES)的数据质量,在很大比例上并不由建库或测序环节决定,而是由样本进入实验室之前的那一段“看不见的流程”决定。同一台测序仪、同一套建库试剂,用一份 4 ℃ 放置 72 小时的 EDTA 抗凝血和一份新鲜采集并及时分离的血样,最终得到的覆盖均一性、重复率、外显子捕获效率可能相差一个档次。本节按“样本类型—采集规范—运输与保存—质量评估—常见问题处理”的工程链条展开,重点讲清每一步的可执行参数与判读依据。

一、四类样本的采集规范与关键差异

血液样本是 WES 的首选来源,核酸产量高、质量稳定。常规采用 EDTA-K2 抗凝管(紫帽),采血量 2~5 mL;婴幼儿或需保留白细胞活性时可用 EDTA 管配合后续冻存。需注意:肝素抗凝会强烈抑制后续 PCR 与酶切反应,严禁使用肝素管;枸橼酸钠管因稀释效应和体积限制,也不作为 WES 首选。采血后应轻柔颠倒混匀 8~10 次,避免剧烈振荡导致白细胞破裂释放基因组 DNA 造成背景升高。

唾液样本适合无创、远程采集场景,但唾液中含有大量口腔上皮脱落细胞、细菌和食物残渣,人源 DNA 占比可能低至 30%~70%。采集前 30 分钟禁食、禁水、禁烟,采集时使用专用唾液采集器(含稳定液),采集量通常 2 mL 左右。唾液样本的常见风险是细菌 DNA 污染和 DNA 降解,因此对后续建库的文库复杂度与外显子捕获特异性要求更高。

新鲜组织样本(手术切除或穿刺)需在离体后尽快处理。理想流程是:离体后 30 分钟内切取目标区域,去除坏死、脂肪和纤维组织,切成约 0.5 cm³ 小块,液氮速冻后转 −80 ℃ 保存,或直接投入 RNAlater/福尔马林固定。若用于 DNA 层面 WES,液氮速冻优于福尔马林固定,因为后者会引起 DNA 交联和片段化。

FFPE 样本是回顾性研究的主力,但也是质量最不可控的一类。石蜡包埋过程中的甲醛固定会导致 DNA 与蛋白交联、胞嘧啶脱氨(C→T 假突变)以及片段化。FFPE 样本的 DNA 通常片段集中在 100~300 bp,DV200(大于 200 nt 的片段占比)是比 DIN 更实用的指标。取材时应由病理医师确认肿瘤细胞含量,一般要求肿瘤细胞占比 ≥ 20%,必要时进行宏观或显微切割富集。

四类样本采集—运输—保存—质量评估工程链 样本类型 采集规范 运输条件 保存方法 核心质量指标 血液 EDTA-K2 抗凝 2~5 mL 禁肝素 颠倒混匀 8~10 次 避免剧烈振荡 记录采集时间 室温暂存 ≤ 4 h 4 ℃ 冷链运输 24 h 内到达 避免冻融 冰袋+保温箱 分离白膜层 −80 ℃ 长期保存 全血可 4 ℃ 短期 避免反复冻融 DNA 浓度 ≥ 20 ng/μL OD260/280 1.8~2.0 DIN ≥ 7 总量 ≥ 1 μg 唾液 专用采集器 约 2 mL 细菌 DNA 风险 前 30 min 禁食禁水 禁烟、漱口后采集 含稳定液混匀 记录采集时间 室温运输 稳定液可常温 7 d 避免高温暴晒 防泄漏密封 −20 ℃ 或 −80 ℃ 提取后 DNA 冻存 避免反复冻融 分装保存 人源 DNA 占比 ≥ 70% OD260/280 1.7~1.9 总量 ≥ 1 μg 片段主峰 > 10 kb 新鲜组织 手术/穿刺 0.5 cm³ 小块 去除坏死脂肪 离体 30 min 内处理 液氮速冻 或 RNAlater 保存 病理确认细胞含量 干冰运输 −80 ℃ 冷链 避免反复冻融 防干冰挥发 −80 ℃ 长期保存 液氮可长期 分装避免反复冻融 记录冻存位置 肿瘤细胞 ≥ 20% DNA 浓度 ≥ 20 ng/μL OD260/280 1.8~2.0 DIN ≥ 7 FFPE 石蜡切片/蜡块 5~10 μm 切片 C→T 假突变 病理确认肿瘤含量 宏观/显微切割 脱蜡去二甲苯 记录蜡块年限 室温运输 避光防潮 避免高温 蜡块优于切片 室温干燥保存 4 ℃ 可短期 提取后 −20 ℃ 避免反复冻融 DV200 ≥ 30% DNA 总量 ≥ 200 ng OD260/280 1.7~2.0 片段 100~300 bp

二、运输与保存:温度、时间与冻融次数

运输环节的核心变量是温度和时间。EDTA 抗凝血在 4 ℃ 条件下 24 小时内到达实验室,基因组 DNA 完整性基本不受影响;若超过 48 小时,白细胞会逐渐凋亡,DNA 出现片段化,DIN 可能从 8 以上降到 6 以下。唾液样本因含稳定液,常温可稳定 7 天左右,但高温(> 30 ℃)会加速降解。新鲜组织必须干冰运输,干冰量应保证到达时仍有剩余,避免中途温度回升。FFPE 蜡块可室温运输,但切片样本应避光防潮,因为切片暴露面积大,易吸湿和氧化。

保存方面,最需要强调的原则是分装、避免反复冻融。基因组 DNA 反复冻融 3 次以上,片段化程度会明显上升,尤其对 FFPE 来源的低质量 DNA 影响更大。建议提取后按 20~50 μL 分装,−20 ℃ 短期(数周)、−80 ℃ 长期(数月至数年)保存。血液样本若不能及时提取,可分离白膜层后 −80 ℃ 冻存,白膜层中白细胞富集,DNA 产量和完整性优于全血冻存。

三、样本质量评估指标与判读

WES 对样本质量的要求可以归纳为“量、纯、整”三个维度。量指 DNA 总量,常规 WES 建库需要 ≥ 1 μg,FFPE 因片段短、连接效率低,建议 ≥ 200 ng 且尽量提高投入量。纯指 OD260/280 和 OD260/230,前者反映蛋白污染,理想范围 1.8~2.0;后者反映盐、酚、多糖等污染,理想范围 ≥ 1.8。若 OD260/230 偏低,可用磁珠纯化或乙醇沉淀重新清洗。整指完整性,新鲜样本用 DIN 或 RIN 评估,DIN ≥ 7 为合格;FFPE 样本用 DV200 评估,DV200 ≥ 30% 通常可满足 WES 建库要求,低于 20% 时需谨慎评估或改用专门的低质量 DNA 建库方案。

需要特别提醒的是,浓度高不等于质量好。一份 OD260/280 为 1.5、DIN 为 4 的样本,即使浓度达到 100 ng/μL,建库后也可能出现插入片段偏短、重复率升高、外显子覆盖不均等问题。因此质量评估必须多项指标联合判读,不能只看单一数值。

四、常见问题与处理策略

问题一:血液样本溶血。溶血会释放血红素和铁离子,抑制 PCR 并增加背景。轻度溶血可尝试用红细胞裂解液洗涤白细胞后再提取;重度溶血建议重新采样。

问题二:唾液样本人源 DNA 占比低。表现为建库后比对率低、细菌序列比例高。处理方式是增加人源细胞富集步骤,或改用口腔拭子采集,减少食物残渣和细菌干扰。

问题三:FFPE DNA 片段过短。DV200 低于 20% 时,常规建库接头连接效率显著下降。可改用单链连接或基于转座酶的低投入建库方案,同时增加 PCR 循环数,但需注意循环数过高会引入偏好性。

问题四:组织样本肿瘤细胞含量不足。肿瘤细胞占比低于 20% 时,体细胞突变检测灵敏度下降。应在病理指导下进行宏观切割或激光显微切割,富集肿瘤区域后再提取 DNA。

工程建议:建立样本接收登记表,至少记录样本类型、采集时间、运输温度、到达时间、外观状态、提取后浓度、OD260/280、OD260/230、DIN 或 DV200、总量。这些字段是后续排障和批次质量追溯的基础,也是判断“问题出在样本还是建库”的关键依据。

把上述采集、运输、保存和质量评估环节串起来看,WES 样本工程的核心逻辑是:在样本进入建库之前,尽可能保留高分子量、低污染、足量的人源 DNA。血液和新鲜组织相对可控,唾液和 FFPE 则需要更严格的采集规范和质量门槛。理解每一类样本的“脆弱点”在哪里,才能在实际项目中提前规避风险,而不是等到测序数据出来后再回头排查。